3. 培養(yǎng)基
1. 液體培養(yǎng)基貯存于4℃冰箱，避免光照，實驗進行前放在37℃水槽中溫熱。
2. 液體培養(yǎng)基（加血清） 存放期為六個月，期間glutamine 可能會分解，若細胞生長不佳，可以再添加適量glutamine。
3. 粉末培養(yǎng)基配制（以1 升為例）：
3.1. 細胞培養(yǎng)基通常須添加10% 血清，因此粉末培養(yǎng)基之配制體積為900ml，pH 為7.2 - 7.4。NaHCO3 為另外添加，若將NaHCO3 粉末直接加入液體培養(yǎng)基中會造成pH 之誤差，或局部過堿。因此粉末培養(yǎng)基及NaHCO3 粉末應分別溶解后才混合，然后用CO2 氣體調整pH，而非用強酸（HCl）或強堿（NaOH），因為氯離子對細胞生長可能有影響，且貯存時培養(yǎng)基的pH 易發(fā)生改變。
3.2. 材料：
3.2.1. 純水（milli-Q 水或二次至三次蒸餾水，水品質非常重要）
3.2.2. 粉末培養(yǎng)基
3.2.3. NaHCO3 （Sigma S-4019）
3.2.4. 電磁攪拌器
3.2.5. 無菌血清瓶
3.2.6. 0.1 或0.2 mm無菌過濾膜
3.2.7. pH meter
3.2.8. 真空幫浦
3.2.9. CO2 氣體
3.3. 步驟：
3.3.1. 取粉末培養(yǎng)基溶于700ml milli-Q 水中，攪拌使其溶解。
3.3.2. 稱取適量之NaHCO3 粉末（數量依培養(yǎng)基種類而異，表一）溶于200ml milli-Q 水中，攪拌使其溶解，然后通入CO2 氣體至飽和，約3-5 分鐘。
3.3.3. 將溶解且含飽和CO2 之NaHCO3 溶液加入溶解之液體培養(yǎng)基中混合。混后溶液之pH應為7.2-7.4，除非pH 值偏差太大，否則不需用酸堿再調整之。若為太堿，可再通入CO2 氣體調整pH。培養(yǎng)基以真空幫浦通過過濾膜時，pH 會升高0.1-0.2。
3.3.4. 以0.1 或0.2 mm 無菌過濾膜過濾滅菌，同時分裝至無菌容器中，標示培養(yǎng)基種類、日期、瓶號等，貯存于4℃。（血清亦可加入培養(yǎng)基中一起過濾）
3.3.5. 配制之培養(yǎng)基配制須作生長試驗與污染測試。
4. 配制培養(yǎng)基之生長測試
4.1. 材料：
4.1.1. MDCK cell （ATCC CCL-34 或CCRC 60004） 4.1.2. 6-well TC plate （or 35 mm TC dish）
4.1.3. methanol
4.1.4. glacial acetic acid
4.1.5. 10% Giemsa solution （GibcoBRL 10092-013）
4.2. 步驟：
4.2.1. 以待測試培養(yǎng)基培養(yǎng)MDCK cell，接種MDCK 細胞于6-well plate （或35mm TC dish） 中，每個well 接種1 × 102 活細胞，同時作對照組實驗。
4.2.2. 接種5～7 天后，在100 倍倒立顯微鏡作觀察細胞群落之生長，待細胞群落大到可以肉眼觀察，而群落間不互相接觸時即可。
4.2.3. 去除培養(yǎng)基，加入1ml Carnoy’s 固定液（甲醇：冰醋酸? 3:1），室溫下靜置10 min。
4.2.4. 去除固定液，水洗二次。
4.2.5. 加入1ml 10% Giemsa solution，，室溫下靜置染色2-3 min。
4.2.6. 去除染液，水洗二次。
4.2.7. 以肉眼計數群落數，并比較之，若新配制或新批號的培養(yǎng)基對細胞生長不佳，則丟棄之。